Ekstrakcja alkaloidów z grzybów je zawierających

Opis ekstrakcji przy użyciu octu i metanolu.

Tagi

Źródło

Journal of Basic Microbiology Vol 34, 1994; 17-22
Jochen Gartz

Odsłony

13565
Opis ekstrakcji przy użyciu octu i metanolu.

Journal of Basic Microbiology
Vol 34, 1994; 17-22
by Jochen Gartz

Zbadano występowanie i ekstraktowano pochodne indolu w sześciu gatunkach z czterech genera wyższych grzybów. Używając do ekstrakcji materiału biologicznego grzybów czystego metanolu wykryto w nich duże ilości psylocybiny i baeocystyny. Zawartość psylocyny w grzybach była wyższa kiedy użyto wodnych roztworów metanolu zamiast samego metanolu, co było spowodowane rozkład psylocybiny za pomocą enzymów. Ekstrakcja za pomocą rozcieńczonego kwasu octowego dawała lepsze wyniki niż ta z użyciem wodnych roztworów metanolu. Prosta, jednoetapowa procedura ekstrakcji za pomocą metanolu jest ciągle najpewniejszą metodą wyodrębniania alkaloidów z masy grzybów.


W skrócie

Według poniższego artykułu ekstrakcja alkaloidów z suchej i zmielonej masy grzybowej jest dobra kiedy używa się czystego metanolu. Gorsza metoda polega na użyciu rozcieńczonego kwasu octowego, który można nabyć w stężeniu 10% w sklepach spożywczych (jeszcze lepiej będzie rozcieńczyć go 1:1 z wodą). Metoda z bezwodnym alkoholem nie powoduje rozkładu za pomocą enzymów, które defosforylizują (? dephosphorylise) psylocybinę do nietrwałej psylocyny. Psylocybina rozkłada się również kiedy używa się do ekstrakcji rozc. kwasu octowego, jednak w mniejszych ilościach niż kiedy używa się roztworu metanolu (lub etanolu?). Zalecany czas ekstrakcji (z użyciem mieszadełka magnetycznego) to 12 godzin dla metanolu przy temperaturze pokojowej, lub 1 godzina przy 45°C. Nie podano czasu ekstrakcji przy użyciu kwasu octowego.
Należy pamiętać, że metanol jest trucizną, dlatego używając go do jakiejkolwiek ekstrakcji konieczne jest przed użyciem odparować go z wyekstraktowanego materiału.


Pełny tekst artykułu:

Przez ostatnie 15 lat wiele razy publikowano materiały na temat wykrywania i wyodrębniania psychotropowych pochodnych tryptaminy: psylocybiny, psylocyny, baeocystyny z grzybów (Gartz 1992, 1993).

Różne metody ekstrakcji alkaloidów z grzybów opierały się głównie na użyciu metanolu jako rozpuszczalnika (Beug i Bigwood 1982, Gartz 1987, Sottolano i Lurie 1983).

W 1985 roku opisano wodno-organiczną metodę ekstrakcji za pomocą kwasu octowego (Casale 1985). Ostatnio, czescy analitycy do ekstrakcji pochodnych indolu z grzyba Psilocybe bohemica Sebek użyli wodnych roztworów metanolu i etanolu (czystych lub z dodatkiem azotanu potasu) (Kysilka i Wurst 1990, Wurst et al 1992). Twierdzono, że możliwe jest uzyskanie większej ilości psylocyny używając do ekstrakcji wodnego roztworu etanolu zamiast bezwodnego metanolu oraz że możliwe jest użycie obu metod razem. W tej pracy opierano się na metodach ekstrakcji psylocybiny, psylocyny i baeocystyny z różnych gatunków grzybów włącznie z P. bohemica Sebek przy użyciu metanolu i innych mieszanin rozpuszczalników (Casale 1985, Kysilka i Wurst 1990, Wurst et al. 1992).

Materiały i metody:

Grzyby: Hodowane sztucznie: Psilocybe semilanceata (FR.) Kumm hodowane na końskim oborniku (Gartz 1991); Psilocybe cubensis (Earle) Singer hodowane na mieszaninie krowiego gnoju i ryżu (Gartz 1989a); P. bohemica hodowany na ryżu/wodzie (Gartz i Mueller 1989; Gymnopilus purpuratus (Cooke i Mass) Singer hodowane na ryżu/trocinach (Gartz i Mueller 1990, Gartz 1991).

Grzyby rosnące naturalnie: Panaeolus cyanescens (BK & BK) SACC. (Oahu, Hawaje 13.11.88); Inocybe aeruginascens Babos (Poczdam 20.05.1987); P. bohemica Sebek (przy Sazava, Czechy 15.11.89).
Wszystkie basidiocarps zostały wysuszone w temp. pokojowej. Pozostałości wody usunięto zamrażając (freeze-drying). Pojedyńcze okazy z każdego gatunku pozostawiono w herbarium Uniwersytetu w Liepzig (LZ).

Metoda ekstrakcji: Próbki (0.01-0.1 g) suchych i zmielonych grzybów ekstraktowano 5 do 20 ml metanolu przez 0.5 do 12 godzin używając mieszadełka magnetycznego w temperaturze pokojowej. W takich samych warunkach ekstraktowano przy użyciu wodnego roztworu kwasu octowego (Casale 1985) oraz wodnego roztworu etanolu (psylocyna) i metanolu (psylocybina) (Kysilka i Wurst 1990, Wurst et al. 1992), których użyto na tych samych porcjach grzybów. Przy użyciu roztworów alkoholi zmieniono czas ekstrakcji na 10 minut dla psylocybiny i 160 minut dla psylocyny (Kysilka i Wurst 1990). Używając rozcieńczonego kwasu octowego, próbkę po ekstrakcji umieszczano w łaźni wodnej na 10 minut po czym analizowano, a następnie była analizowana 10 minut po ekstrakcji i analizie, po czym analizowano ją jeszcze raz (Casale 1985).

Rozdzielanie i analizę pochodnych indolu za pomocą HPLC i TLC opisano gdzie indziej (Gartz 1987, Semerdzieva et al. 1986, Wurst et al. 1992). Analizę na obecność enzymów fosfatazy (? phosphatase) w ekstraktach również opisano w innej pracy (Weber i Horita 1963).

Wyniki:

W doświadczeniu tym ekstrakcja czystym metanolem psylocyny, psylocybiny i baeocystyny nie była ukończona po 30 minutach dla wszystkich gatunków, a nawet po sześciu godzinach przy analizie P. cubensis i G purpuratus. Całkowite wyodrębnienie alkaloidów z masy grzybów obserwowano po 12 godzinach. Po tym czasie nie otrzymano żadnych pochodnych indolu ekstraktując próbkę wodnym roztworem metanolu/etanolu czy kwasu octowego lub też używając chloroformu przy psylocynie.

Baeocystynę czyli niekompletnie zmetylowany odpowiednik i prawdopodobny prekursor psylocybiny (Gartz 1989a) wykryto we wszystkich badanych grzybach ekstraktując je metanolem, ale w niektórych przypadkach wykryto ją w bardzo małych ilościach (Tabela 1).

Psylocybina i psylocyna występowała w takich samych ilościach, w jakich wykrywano ją wcześniej (Gartz 1992, 1993). Ta substancja jest estrem kwasu fosforowego jak psylocybina i baeocystyna. Podobne ilości psylocyny wykryto w ekstraktach z P. cubensis i G. purpuratus przy użyciu wodnego roztworu kwasu octowego kontra metanol (Tabela 2). Zawartość psylocybiny i psylocyny była ta sama pod względem ilości jak ta odkryta wcześniej (Gartz 1992, 1993). Substancja ta wygląda na ester kwasu fosforowego, tak jak psylocybina i baeocystyna. Podobne stężenie psylocyny wykryto w ekstraktach P. cubensis i G. Purpuratus przy użyciu wodnego roztworu kwasu octowego zamiast czystego metanolu (tabela 2).

Tabela 1
Zawartość alkaloidów indolowych w grzybach różnych gatunków w ekstraktach przy użyciu czystego metanolu jako rozpuszczalnika (%, sucha masa).

Gatunek Psylocybina Psylocyna Baeocystyna
P. semilanceata 0.98 - 0.34
P. bohemica 0.85 0.02 0.04
P. bohemica (hodowany sztucznie) 0.93 0.04 0.02
P. cubensis 0.63 0.11 0.02
G. purpuratus 0.34 0.29 0.05
I. aeruginacens 0.40 - 0.21
P. cyanescens 0.32 0.51 0.02

Tabela 2
Zawartość alkaloidów przy użyciu kwasu octowego do ekstrakcji suchych grzybów (%, sucha masa).

Gatunek Psylocybina Psylocyna Baeocystyna
P. semilanceata 0.97 0.15 0.11
P. bohemica 0.60 0.21 -
P. bohemica (hodowany sztucznie) 0.65 0.28 -
P. cubensis 0.45 0.25 -
G. purpuratus 0.24 0.35 0.01
I. aeruginacens 0.32 0.05 0.15
P. cyanescens 0.20 0.61 -

Tabela 3


Wyniki ekstrakcji grzybów sześciu gatunków przy użyciu wodnych mieszanin metanolu i etanolu (%, sucha masa).

Gatunek Psylocybina Psylocyna Baeocystyna
P. semilanceata 0.80 0.15 0.11
P. bohemica 0.60 0.21 -
P. bohemica (hodowany sztucznie) 0.65 0.28 -
P. cubensis 0.45 0.25 -
G. purpuratus 0.24 0.35 0.01
I. aeruginacens 0.32 0.05 0.15
P. cyanescens 0.20 0.61 -

Używając do ekstrakcji mieszaniny etanolu z metanolem udało się uzyskać więcej psylocyny z każdych badanych grzybów, jednak zawsze wyodrębniano mniej psylocybiny niż kiedy stosowano czysty metanol (Tabela 3).

Dodatkowo, można było wykryć dużą aktywność enzymów fosfatazy w wodnych roztworach wszystkich gatunków grzybów. Kiedy użyto kwasu octowego jako rozpuszczalnika, tylko ekstrakt z P. cubensis i P. cyanescens pokazywał znaczącą aktywność enzymów. Przez to psylocybina kompletnie przekształcała się (za pomocą enzymów, dephosphorylated) do psylocyny kiedy ogrzewano próbkę z ekstraktem z kwasu octowego, pozatym nie wykryto baeocystyny w P. cyanescens.

Komentarz

Wiadomo, że ekstrakcja na metanolu potrzebuje czasu ponad 12 godzin w temperaturze pokojowej (Beug i Bigwood 1982, Gartz 1987, Semerdzieva et al. 1986) lub jedną godzinę przy 45°C (SCOTTOLANO i Lurie 1983) by ekstrakcja przebiegła całkowicie (czyli by zostały wyodrębnione wszystkie alkaloidy).

W naszych badaniach psylocyna wykazywała duże stężenie przy prostej ekstrakcji metanolem różnych gatunków (Gartz 1987, 1989c, 1991). Przeprowadzając ilościową analizę na pochodne indolu po biotransformacji tryptaminy i podobnych związków w owocnikującej grzybni P. cubensis wykryto dużą zawartość psylocyny w każdym grzybie, dla przykładu w tych ekstraktowanych metanolem (Gartz 1989a, b). Czescy analitycy, używając wodnego r-ru metanolu i etanolu jako rozpuszczalnika do analizy P. bohemica, nie zawsze analizowali tą samą partię grzybów (Kysilka, osobisty kontakt (pers. communication) 1989).

Znaleźliśmy różnice między pojedynczymi grzybami każdego gatunku, także na P. bohemica pobieranych z tego samego terenu (Gartz i Mueller 1989), jak również z kontrolowanych (uprawianych?) kultur (Gartz 1991). Dodatkowo, dużą aktywność enzymów fosfatazy w wodno-alkoholowych roztworach ekstraktów z P. cubensis i innych zawierających psylocybinę grzybów wykryto i opisano wiele lat temu (BOCKS 1968, Gartz 1993, Weber i Horita 1963). Enzymy te wyodrębniono rozpuszczalnikiem zawierającym wodę i powodowały one częściową defosforylację psylocybiny do psylocyny (Tabela 1 i 3). Używając tych roztworów obserwowano w niektórych przypadkach sinienie mieszaniny po ekstrakcji, a był to sygnał częściowego utlenienia psylocyny (BOCKS 1968, Gartz 1989a, Weber i Horita 1963). Interesującym jest, że większość baeocystyny rozkładała się podczas ekstrakcji wodą zawierającą alkohol (Tabela 1 i 3).

Casale (1985) opisał szybkie tworzenie psylocyny po całkowitej defosforylacji psylocybiny przy ogrzewaniu ekstraktu na rozcieńczonym kwasie octowym. Jest teraz jasne, że przemiana ta jest powodowana udziałem enzymów i nie jest powodowana samym kwasem. Dla przykładu estry kwasu fosforowego i psylocybiny, baeocystyny i aeruginascyny (aeruginascin) w tychże kwasowych ekstraktach z I. aeruginacens były stabilne przy ogrzewaniu w przeciwieństwie do tych samych alkaloidów w roztworach P. cubensis i P. cyanescens. Wygląda na to, że aktywne enzymy fosfatazy można wyodrębnić wodnym roztworem kwasu octowego tylko z tych dwóch odmian - w przeciwieństwie do ekstrakcji z użyciem wodnych roztworów alkoholi. Poza tym próby rozdzielenia psylocybiny i psylocyny prostymi metodami używając mieszaniny organicznych rozpuszczalników i wody były niezadawalające (THOMSON 1980).

Badania te pokazują, że wysokie stężenie psylocyny w P. bohemica (Kysilka i Wurst 1990, Wurst et al. 1992) i brak jej wykrycia wcześniej (Gartz i Mueller 1989) były sztucznym zjawiskiem spowodowanym enzymatyczną przemianą psylocybiny przy użyciu wodnych roztworów organicznych rozpuszczalników. Ekstrakcja z czystym metanolem jest najbezpieczniejszą metodą przy wyodrębnianiu związków z rodziny indoli z grzybów różnych gatunków.

Podziękowania

Autor dziękuje następującym osobom: G. Drewitz, J. Allen, G.K. Mueller oraz M. Semerdzieva który geneously supplied herbarium material and/or valuable information.

Bibliografia

  • Beug MW, Bigwood J. 1982. Psilocybin and psilocin levels in twenty species from several genera of wild mushrooms in the Pacific Northwest, U.S.A. J. Ethnopharm, 5, 271-289.
  • Bocks SM. 1968. The metabolism and psilocin and psilocybin by fungal enzymes. Biochem. J., 106, 12-13.
  • Casale JF. 1985. An aqueous-organic extraction method for the isolation and identification of psilocin from hallucinogenic mushrooms. J. Forensic Sci., 30, 247-250.
  • Gartz J. 1985. Zur Isolierung des Baeocystins aus den Fruchtkoerpern einer Psilocybe-Art. Pharmazie, 40, 274.
  • Gartz J. 1987. Variation deer Indolalkaloide von Psilocybe cubensis durch unterschiedliche Kultivierungsbedingungen. Beitraege z. Kenntnis d. Pilze Mitteleuropas, 3, 275-281.
  • Gartz J. 1989a. Biotransformation of tryptamine derivatives in mycelial cultures of Psilocybe. J. Basic Microbiol., 29, 347-352.
  • Gartz J. 1989b. Biotransformation of tryptamine in fruiting mycelia of psilocybe cubensis. Planta Med., 55, 249-250.
  • Gartz J. 1989c. Occurence of psilocybin, psilocin and baeocystin in Gymnopilus purpuratus. Persoonia, 14, 19-22.
  • Gartz J, Mueller GK. 1990. Analysis and cultivation of fruit bodies and mycelia of Psilocybe bohemica. Biochem. Physiol. Pflanzen, 184, 337-341.
  • Gartz J, Mueller GK. 1990. Versuche zur Kultur von Gymnopilus purpuratus, Purpurflaemmling. Myk. Mitt. blatt (Halle), 33, 29-30.
  • Gartz J. 1991. Further investigations on psychoactive mushrooms of the genera Psilocybe, Gymnopilus and Conocybe. Ann. Mus. civ. Rovereto (Italy), Sez. sc. nat.,7, 265-274.
  • Gartz J. 1992. New aspects of the occurance chemistry and cultivaion of European hallucinogenic mushrroms. Ann. Mus. civ. Rovereto (Italy), Sez. sc. nat., 8, 107-124.
  • Gartz J. 1993. Narrenschwaemme. Psychotrope Pilze in Europa in Europa. Herausforderung an Forschung und Wertsystem. Editions Heuwinkel. Genf/Neuallschwill.
  • Kysilka R, Wurst M. 1990. A novel extraction procedure for psilocybin and psilocin determination in mushroom samples. Planta Med., 56, 327-328.
  • Semerdzieva M, Wurst M, Koza T, Gartz J. 1986. Psilocybin in Fruchtkoerpern von Inocybe aeruginascens. Planta Med., 47, 83-85.
  • Sottolano SM, Lurie IS. 1983. The quantitation of psilocybin in hallucinogenic mushrooms using high performance liquid chromatography. J. Forensic Sci., 28, 931-935.
  • Thomson BM. 1980. Analysis of psilocybin and psilocin in mushroom extracts by reversed-phase high performance liquid chromatography. J. Forensic Sci., 25, 779-785.
  • Weber LJ, Horita A. 1963. Oxydation of 4 and 5-hydroxy-indole derivatives by mammalian cytochrome oxydase. Life Sciences 1, 44-49.
  • Wurst M, Kysilka R, Koza T. 1992. Analysis and islolation of indole alkaloids of fungi by high-performance liquid chromatography. J. Chromatogr., 593, 201-208.

  • Tekst oryginalny w języku angielskim z erowid.org.

    Oceń treść:

    0
    Brak głosów

    Komentarze

    What is symbol of unity of a woman and a man ({:-:})' it is a mirror free of love and underst{ae}nding be love of love to be under tight control of *** Ann Schulgin you have to be me. Miranda McKennitt-Schulgin-Vega. {}{NaSa}.A.{2c-i}.A.{US}.A. {:****:} { identity symbol } {space remembers} {~~KNOTT}{ }
    Zajawki z NeuroGroove
    • Mefedron

    Wiek: 20lat

    Dawka: bliżej nieokreślona. ;p

    Doświadczenie: alkohol, tytoń, konopie, DXM, kofeina, LSD, XTC, 2C-E

    S&S: Pierwszy raz z mefedronem. Nieco mieszane uczucia. Z jednej strony byłem zmęczony i było sporo (jak na mnie) jarania w tamtym czasie, z drugiej strony nowa substancja, empatogen, szansa na pozytywne doświadczenie. Ostatecznie nakręciłem się na to drugie.

    • Dekstrometorfan
    • Metoksetamina
    • Tripraport

    Sam w pustym domu, własny pokój. Pełen komfort psychiczny

     

    Słowem wstepu

    Dość już dawno nie udało mi się naćpać dysocjantami. Lubię tą grupę narkotyków, ale ostatnimi czasy potrzebuję do pełnego zdysocjowania się dobrych warunków. Warunki w końcu się znalazły, znalazła się i paczka acodinu. Zazwyczaj wsuwam sobie 2, ale tym razem postanowiłem uskutecznić wzmacnianie dysocjantu dysocjantem. Testowałem już ten miks, jednak w zbyt dużych dawkach - totalna amnezja. Miałem nadzieję, żetym razem stosunek faza/pamięć będzie nieco lepszy.

    • Etanol (alkohol)
    • Grzyby halucynogenne
    • Klonazepam
    • Szałwia Wieszcza
    • Zolpidem

    Miejsce oraz nastawienie, którego chyba tłumaczyć nie muszę, znajduje się w reporcie.

    Substancje: (zachowana kolejność) około 0.2g suszu Jej Dysocjacyjności, 3g P.Cubensis na dwie osoby, po dwa piwa na głowę, 6mg klona i 20mg zolpidemu. Ajajaj xD

    Podróżnicy: ja oraz S.

    Drogi NG ;)

    randomness